vector nti破解版分享給大家，vector nti advance 11完美破解的喲，包括了詳細的安裝破解教程和crack文件，it貓撲網小編親測可以使用，沒有下載或者不會的趕緊拿走吧。
vector nti advance介紹
Vector NTI是一套功能強大、界面美觀而又友好的分子生物學應用軟件包。它主要包括四個組件，分別對DNA、RNA和蛋白質進行各種分析和操作。
vectorntiadvance11.5.1破解安裝說明
到it貓撲網下載vectorntiadvance11.5.1的安裝程序和破解補丁
先運行安裝程序，這里小編提示，一定要以管理員身份運行，特別是win10、win8等用戶
接受許可，繼續安裝
安裝位置大家可以自己選擇，貓撲網只是供測試的，默認在c盤
根據自己的需要選擇vector nti advance安裝類型
稍等一會兒
ok，vector nti advance11.5.1已經安裝完成了，安裝完成后重啟計算機建議
打開選擇的crack文件夾，復制所有的破解文件
把破解文件復制到安裝后的程序文件夾下（默認為C:\Program Files\Invitrogen\Vector NTI Advance 11\），替換原文件即可。
打開vector nti advance，用破解文件替換原文件后，打開Vector NTI，如果發現沒有破解成功，（是否破解成功的判斷方法：Demo mode時（未破解成功），窗口右下角有個紅色×；Dynamic license時，窗口右下角變成一個綠色的√。）請按照以下操作進行
請打開“Help”菜單中的“License Manager”，在Applications選項卡中，將所有程序后面的“Demo mode”，都改為“Dynamic license”。
然后退出軟件，下次打開時就能正常使用了。如下圖右下角已經綠色的勾，說明破解成功了
vector nti advance功能
一，Vector NTI
作為Vector NTI Suite的核心組成部分，它可以在各種分子生物學研究項目的全過程中提供數據組織、編輯和分析支持。
（一）對分子序列的操作
我們以一個DNA序列為例，進行一系列的常規分析；最后將此DNA序列翻譯成氨基酸序列，并對此氨基酸序列進行各種分析。
A，DNA序列為豬生長激素的cDNA序列，長為761bp。首先使用Vector NTI的Create New命令將此序列導入到Vector NTI的數據庫中：
1，第一種方法：如果只知道序列時，點擊Molecule才菜單中的Create New——Using Sequence Editor（DNA/RNA……）；
2，在出現的“New DNA/RNA Molecule”對話框中，首先在General填入導入序列的名稱——PGH；
3，在DNA/RNA Molecule活頁中，選中Linear DNA， Animal/other Eukaryotes，Replicon Type中選Chromosome；
4，Description中填入：S.Scrofa Growth hormone mRNA;
5，在Sequence and Maps中點擊“Edit Sequence”按鈕，將DNA序列復制后，點“Paste”按鈕-點“OK”－確認后就可以完成序列導入。
B，如果是一個從GenBank上下載的序列文件，則：點擊 “Molecule” 菜單-Open-Molecule files命令，找到序列文件，在File format中選中GenBank Files；點擊OK。
（二）常規操作：
當序列導入完成后，在桌面出現三個窗口，上左側的窗口中顯示的是該序列的常規信息，上右側窗口則以圖形的格式展示序列的特征區及酶切圖譜等。下面一個窗口顯示的是序列：默認狀態下以雙鏈形式出現，也可以更改為單鏈顯示。
1．選擇序列區域：在圖形區域或序列區域直接拖動鼠標左鍵，同時在最下端的狀態欄中顯示出所選區域的范圍。
2．刪除：選中后直接點擊鍵盤上的Delete鍵，確認后即可刪除。
3．選中序列片段后，點擊Edit菜單，用其中的命令可以完成對此片段的剪切、復制、刪除、定義為新的特征區和用其它序列來代替等。
4．當點在其一特定位置時，我們也可以在此位置插入新的序列：Edit – New – Insert Sequence as
5．當希望序列顯示單鏈時，點擊View – Show Both Strands
（三）常規分析：
1．設計PCR Sequence Primer, Hybridization, Probes：
選中設計引物的模板區或點擊Analyze中的相應命令即可。
需要注意的是，在設計前，首先得將序列存入數據庫中，具體設計由于我們推薦使用Oligo，所以此處不詳述。
2．序列基本信息分析：
選中序列區段后，選Analyze – Oligo Analysis, 在Oligo Analysis對話框中，點擊Analyze按鈕，即可得到分子量、GC含量、Tm值、3‘端的自由能、回文結構及重復序列等基本信息。
3．酶切圖譜分析
點擊Analyze菜單中Restriction Sites命令，出現“Restriction Map Setup”對話框，點擊Add按鈕，填入需要分析的位點，不需要的位點夜可以選中后點Remove按鈕移除。為了顯示正確，我們可以設定超過一定位點數量的酶不顯示，可以限定分析的區域等。點擊OK后程序自動完成酶切分析。
4．Motif查找
點擊Analyze菜單中的Motifs命令，在出現的Motifs Setup對話框中我們可以添加新的Oligo或從Oligo Database和Oligo List中選取；選中后點擊OK按鈕，程序完成Motif的查找，同時給出相似性的百分比。
5．ORF查找
點擊Analyze菜單中的ORF命令，在出現的ORF Setup對話框中，填入ORF的最小長度（多少個密碼子）以及其它一些設定后點擊OK，程序自動完成ORF的查找。
6．翻譯
翻譯前選中一個ORF或一個區域，這里我們希望把pGH cDNA基因完全翻譯成蛋白質，因此選中最長的一個ORF（7－657bp）。點擊Analyze菜單中的Translate命令中的“Into New Protein”-“Direct Strand”,在出現的“New Protein Molecule”對話框中給出新蛋白質的名稱后點擊確定，程序完成翻譯并打開一個新的窗口，顯示氨基酸序列。
7．反翻譯
選中氨基酸序列片斷，點擊Analyze菜單中的BackTranslate命令，確認是“整個序列”還是“僅為選中的序列”后，即可設定簡并度及組織特異性來完成反翻譯。
（三）模擬電泳：
模擬電泳是指對DNA片段進行酶切分析后，通過電腦模擬電泳過程，將酶切片段分離。該功能有利于評估電泳時間，便于驗證實際電泳結果的好壞。
1．點擊Gel菜單 – Create New命令：出現Gel Setup對話框，首先選擇電泳介質的類型－“Agarose Gel”，以及膠的濃度、電壓、膠長和Buffer種類。
2．點擊OK后即打開一個電泳界面，左側是對電泳情況的描述，右側則為膠板。
3．首先配置一個Marker：點Gel菜單 – Create Gel Marker, 出現New Gel Marker對話框, 首先輸入Marker的名稱：pGH-Marker，在Gel Marker活頁中輸入自己設定的片段，100，200，300，400，500，600，1000bp,點擊確定。
4．樣品制備：點Gel菜單 – Create Gel Sample命令出現Create Gel Sample對話框，選擇來源分子SSPGH，選中AvaI和SmaI兩個酶，輸入Sample的名稱SSPGH- AS。此時我們可以把酶切的片段直接加入到膠上，也可以加入到樣品列表中或保存為Marker，我們點擊Add to Gel，則在膠上出現1號樣品。
5．點Marker到膠中：點擊第二行工具欄中的Add Marker Lane圖標，出現Choose Database Gel Marker對話框，選中pGH - Marker，點擊OK，則Marker出現在2道
6．電泳：用鼠標點擊右側窗口激活膠板，點擊第二欄工具欄中的雙箭頭，開始電泳，同時在旁邊顯示電泳時間，再次點擊雙箭頭，電泳停止。
7．計算兩條帶分開時間：選中沒有分開的條帶，點工具欄中的計算器Calculate Seperation Time，即可得到所需信息。
8．導出膠圖：激活膠板，點擊工具欄中的Camera工具,出現Camera對話框,選中需要導出的選項，結果可以到剪貼板，也可以保存成文件。到剪貼板后就可以在Word等文檔編輯器中粘貼。
（四）圖形操作
對于圖形展示的序列信息，我們可以對圖形進行各種修飾和改動，并最終導出需要的圖形，如果序列是質粒，則可得到質粒圖譜。
我們還是以SSPGH序列為例：
1．激活圖形欄，點擊工具欄中的Edit Picture。此時，點擊任意一個需要改動的組件，則鼠標變為四方向箭頭，按住左側則可以任意拖動其位置。
2．點擊左鍵，選中Properties命令，則在Properties對話框中可以改變文字，字體，連線的粗細和顏色。
3．對于特征序列，我們還可改變其填充方式，箭頭方向等。
4．加入注釋：點擊工具欄中的回形針按鈕，出現Annotation對話框，輸入注釋文字（支持中、英文），如：“這是一個測試Sequence”。點擊確定后，文字就出現在圖示窗口中，同樣可以改變其位置、字體、顏色等。
5．修改完成后，點工具欄中的命令，同樣可以到剪貼板或文件。
二．組件AlignX
運行AlignX后出現四個窗口，從上到下，從左到右分別為序列信息窗口，進化樹窗口，同源比較圖示窗口和序列比較窗口。對于同源比較可以分為兩類：一類是兩個或幾個序列（包括DNA/RNA和蛋白質序列）的比較，此時僅限于比較序列的相似性；另一類則是多個序列間的比較并得出系統進化樹。
（一）導入外源序列的方法：點擊Project菜單中Add Files命令，選擇需要比較的序列文件，點擊打開按鈕，確認是DNA/RNA還是Protein Sequence后，點擊Import按鈕就可以完成序列的導入任務。
（二）我們以程序本身提供的演示Project來講述AlignX的使用：
1．選擇Project菜單Open命令，找到Vector NTI的Demo Projects文件夾，打開DNA.apr文件；
2．在文本窗口中，使用鼠標左鍵雙擊任一文件名，就可以得到該文件的所有基本信息；
3．建立一個新的比較策略并進行比較：
①在文本窗口中，按住Ctrl鍵選中四個序列：AF××××
②點擊Alignment菜單中Alignment Setup命令，出現Alignment Setup對話框，在此對話框中有30個選項來確定最終比較結果展示方式，這里我們使用默認值即可。
③點擊Alignment菜單中的Align Selected Sequence命令，片刻后程序完成比較并給出結果和進化樹；
④在View菜單中，我們可以通過Edit Alignment命令來編輯比較結果，使用Display Setup命令來改變結果的展示方式和顏色等。
4．結果的導出：
①進化樹的導出：激活進化樹窗口，點擊工具欄中的Export Tree按鈕即可將進化樹保存為.Ph文件，并可被其他樹編輯軟件所識別。或者點擊Edit菜單中的Camera命令，將圖像保存到剪貼板后在Word等文檔編輯軟件中粘貼；
②序列比較結果的導出；點擊Project菜單中的Export MSF Format命令，將結果保存為.msf文件后，用GeneDoc打開進一步進行編輯和修飾。
三．Contig Express
該組件讓您能夠直接從測序儀或其它文件格式（如GenBank和Fasta等）中導入序列，并將這些阿序列片段拼接成一個長片段。在拼接的過程中可以顯示測序圖譜，可以自動去除載體序列及測序模糊序列。同時能在拼接的完成序列堿基的改動。
1．點擊Project菜單中的Open命令，找到Demo Project文件夾中的DNA.cep文件。當然我們也可以導入自己的序列，方法是點Project菜單中的Add Fragments命令，在此可以導入各種格式的文件。
2．建立拼接策略：點擊Assemble菜單中的Assembly Setup命令，出現Assembly Setup對話框，在此我們使用程序的默認值，不作改動。
3．使用Ctrl鍵將.abi文件全部選中，并點擊Assemble菜單中的Assemble Selected Fragment命令，程序自從完成拼接并出現一個Contig1的圖標。
4．雙擊Contig1圖標，出現另一個窗口展示一個8片段拼接結果。
5．激活序列窗口后，點擊View菜單中的Show All Chromatograms命令，就可以顯示每個序列的測序圖譜。
6．編輯圖譜及序列：如果想改變圖譜或序列上的某個堿基，就可以用框標點擊該堿基，后輸入新的堿基即可。同時，在圖形窗口雙擊任一片段就可以打開一個新的窗口，在此窗口中可以對此序列進行直接的改變了。
7．拼接結果的導出：點擊Edit菜單中的Select All命令選上拼接結果序列，在此點擊Edit菜單，使用Copy命令將拼接結果復制出來。
四．BioPlot
該組件可以完成對DNA、RNA和氨基酸序列的各種理化特性的分析，實際上在DNAStar中有兩個組件來分別完成對DNA/RNA和氨基酸序列的分析，其分析效果并不比BioPlot差，所以在此不再詳述。
